1. Рогов И.А. Химия пищи. Часть I: Белки: структура, функции, роль в питании. - / И.А. Рогов, Л.В. Антипова, Н.А. Жеребцов, Н.И. Дунченко: учебное пособие. - М.: Колос,1999.- 397 с.
2. Рогов, И.А. Общая технология мяса и мясопродуктов : учеб. пособие. - М. : Колос, 2000. - 367 с.
3. Лисицын Андрей Борисович, Горбунова Наталья Анатольевна, Небурчилова Нина Федоровна, Петрунина Ирина Всеволодовна Тенденции развития мясной отрасли АПК РФ // Журнал Все о мясе. 2016. №1.
4. Доктрина продовольственной безопасности Российской Федерации, утвержденная Указом Президента Российской Федерации от 30 января 2010 г. № 120. URL:http://pravo.gov.ru/proxy/ips/?docbody=&firstDoc= 1&lastDoc=1&nd=102135612
5. Прянишников В.В. Пищевые волокна в технологии мясных полуфабрикатов // Рациональное питание, пищевые добавки и биостимуляторы. – 2016. – № 5. – С. 25-26; (начало 1.2)
6. Ильина Надежда Михайловна, Куцова Алла Егоровна, Буйленко Юлия Сергеевна, Фомина Татьяна Юрьевна Применение методов биотехнологии в мясной промышленности // Вестник Южно-Уральского государственного университета. Серия: Пищевые и биотехнологии. 2017. №3.
7. Антипова, Л.В. Использование вторичного коллагенсодержащего сырья мясной промышленности / Л.В. Антипова, И.А. Глотова. – СПб.: ГИОРД, 2006. – 384 с.
8. Лукин, А.А. Гистологические изменения субпродуктов II категории крупного рогатого скота под действием ферментного препара-та животного происхождения / А.А. Лукин // Технология и товароведение инновационных пищевых продуктов. – 2012. – № 5 (16). – С. 28–33.
9. Жаринов, А.И. Вторичное белоксодержащее сырье: способы обработки и использования / А.И. Жари-нов, И.В. Хлебников, И.К. МаДалиев // Мясная пром-сть. - 1993. - № 2. - С. 22-24.
10. Технология мяса и мясопродуктов / под ред. Н.Н. Рогова. - М.: Агропромиздат, 1988. - 576 с
11. Салаватулина, P.M. Рациональное использование сырья в колбасном производстве / P.M. Салаватулина. - М.: Агропромиздат, 1985. - 256 с.
12. Сёркл, С.Д. Соевые бобы: переработка и продукты / С.Д. Сёркл, А.К. Смит // Источники пищевого белка. - М.: Колос, 1979. - С. 67-87
13. Руководство по практическим аспектам производства мясопродуктов для технологов мясной промышленности. – Протеин технолоджис Интернэшнл, 2002. – 150 с. 134
14. Особенности технологии колбасных изделий заданного химического состава: обзорная инф. / М.П. Воякин [и др.]; ЦНИИТЭИ. - М., 1982. - 36 с
15. Горовой, В.И. Основные направления использования вторичных ресурсов на предприятиях пищевой промышленности / В.И. Горовой, В.И. Есейчик, Г.Н. Хиль. - М.: АгроНИИТЭИмясомолпром, 1987. - С. 14-17.
16. New Protein Foods in Human Health: nutrition, prevention and therapy. (edit. F.H. Steinke, D.H. Waggle, M.N. Volgarew). TX 558.S7N48 1992.
17. V.R. Voung, F.N. Steinke. Protein and Amino Acid. Requirements in Relation to Dietary Food Protein Weeds. (in the book of New Protein Foods in Human Health: nutrition, prevention and therapy). TX 558. S7N48. 1992
18. Cao Y, Klimberg V.S. Glutamine enhances gut glutathione production J..Parenter. Enter. Nutr 1998.22 (4). 174-179.
19. SteigmanA.All Dietary Fiber is fundamentally functional// Cereal foods world, 2003, vol. 48, 3,р. 128-132.
20. Гурвич, Е. Т. Влияние финансовых санкций на российскую экономику [Текст] / Е. Т. Гурвич, И. В. Прилепский // Вопросы экономики. – 2016. – № 1. – С. 5–35.
21. Howell E. Food, nutrition, and the prevention of cancer: a global perspective. Washington, DC: World Cancer Research Fund/American Institute for Cancer Research, 2007. 26с.
22. V.R. Voung, F.N. Steinke. Protein and Amino Acid. Requirements in Relation to Dietary Food Protein Weeds. (in the book of New Protein Foods in Human Health: nutrition, prevention and therapy). TX 558. S7N48. 1992.
23. SteigmanA.All Dietary Fiber is fundamentally functional// Cereal foods world, 2003, vol. 48, 3,р. 128-132.
24. Gets Godfrey S, Reardon Catherine A. Nutrition and Cardiovascular Disease // Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 2007, 27. – pp. 2499 – 2506
25. Erbersdopier H. F. Summarising lecture and prospects for future researchand development // Food Research International. 2002. V. 35. Issues 2-3. Functional foods – Challenges for the New Millenium, 323-325.
26. ColloidesNaturelsInternation – Fibregum: A Natural DietryFubre. Dr. T.P. Kravtchenko. ColloidesNaturelsInternation. BP 4151, F- 76723 Rouen cedex, France. Food Ingredients , 1999-2000. рр. 355-384.
27. EnergyandProteinRequirements, FAO/WHO/UNU, Tech. Rep. Ser. № 724 World Health Organization, Geneva, 1985.
28. ГОСТ Р 52349–2005. Продукты пищевые. Продукты пищевые функциональные. Термины и определения. 2005. 4c.
29. ГОСТ 26188-2016 Продукты переработки фруктов и овощей, консервы мясные и мясорастительные. Метод определения pH. 2016. 8с.
30. ГОСТ 26183-84 Продукты переработки плодов и овощей. Консервы мясные и мясорастительные. Метод определения жира.1984. 5с.
31. ГОСТ 25555.4-91 Продукты переработки плодов и овощей. Методы определения золы и щелочности общей и водорастворимой золы. 1991. 5с.
32. ГОСТ 8756.11-2015 Продукты переработки фруктов и овощей. Методы определения прозрачности и мутности. 2015. 8с.
33. ГОСТ 28561-90 Продукты переработки плодов и овощей. Методы определения сухих веществ или влаги. 1990. 6с.
34. ГОСТ Р 50779.23-2005 (ИСО 3301:1975) Статистические методы. Статистическое представление данных. Сравнение двух средних в парных наблюдениях. 2005. 6с.
35. ГОСТ 9959-91 Продукты мясные. Общие условия проведения органолептической оценки. 1991. 6с.
36. ГОСТ Р 51447-99. Мясо и мясные продукты. Методы отбора проб. 1999. 6с.
37. ГОСТ 10846-91 Зерно и продукты его переработки. Метод определения белка. 1991. 7с.
38. ГОСТ 25011-2017 Мясо и мясные продукты. Методы определения белка. 2017. 7с.
39. ГОСТ 33692-2015 Белки животные соединительнотканные. Общие технические условия. 2015. 6с.
40. Доронин А.Ф., Шендеров Б.А. Функциональное питание. М.:ГРАНТЪ, 2002. – 76, 296 с
41. Зимон А.Д., Евтушенко А.М. Адгезия пищевых масс. – М.: ДеЛипринт, 2008. – 145 с.
42. Жаринов А.И., Кузнецова О.В., Черкашина Н.А. Основы современных технологий переработки мяса. – М., 1997. – 179 с.
43. Зиновий Э. Популярная диетология. М.: Экономика, 2009. 49c.
44. Иванова Е.А. Пищевые волокна в лечебно-профилактическом питании (российский и зарубежный опыт) –М: 2000г.
45. Коган М.Б., Пожариская Л.С., Рындина В.П., Фрейндлин Е.М. Физико-химический и бактериологический контроль в мясной промышленности. Справочное руководство. Изд. второе, дополненное и исправленное. – М.: «Пищевая промышленность», 1971. – 462с.
46. Курзина М. Н. Пищевые добавки для мясной индустрии. // Пищевые ингредиенты. Сырье и добавки. – М., 2002. - № 1. – 60с.
47. Конников А.Г. Технология колбасного производства / А. Г. Конников. - 2-е изд., перераб. и доп. М.: Пищепромиздат, 1961. - 519 с.
48. Лаврова Л.П., Крылова В.В. Технологий колбасных изделий. М.: «Пищевая промышленность», 1975. – 344 с.
49. Лушников В.П., И.В.Симакова. Использование биологически активных добавок в производстве продуктов животного происхождения. М.: Саратов, 2016. 8,14с.
50. Макарова Л.Б. Поверхностные явления и дисперсные системы. Учебное пособие. - М.: 2001. – С. 21,22,90.
51. Макарова Л.Б. Основы физической химии биосистем. – М.: 2002. – С. 57,66,67.
52. Нечаев А.П., Траунберг С.Е., Кочеткова А.А. Пищевая Химия. – СПб.: ГИОРД. 2001. – 431с.
53. Носач Н.И. Кулинарная характеристика полуфабрикатов и готовых изделий. – М.: Высшая школа, 1990. – 255с.
54. Погожева А.В. Пищевые волокна в лечебно-профилактическом питании./Вопросы питания.-1998г.-№1-с.39-42
55. Покровский А.А. Химический состав пищевых продуктов. Справочные таблицы содержания основных пищевых веществ и энергетической ценности пищевых продуктов: справочник. – М.: Пищевая промышленность. 1976.
56. Просеков А.Ю. Технология производства блюд диетического, детского и лечебно-профилактического питания: учебное пособие. М.: Кемерово, 2012. 12с.
57. Рафеенко В.В. Все о птицеводстве. – Ростов-на-Дону: Баро-Пресс, 1999. – 383 с.
58. Рогов И.А., Л.В.Антипова, Н.И. Дунченко, Н.А.Жеребцов. Химия пищи. – М.: Колос, 2000. – 97 с.
59. Руководство по методам контроля качества и безопасности биологически активных добавок пищи. М.: Минздрав России, 2004. 240с.
60. СанПиН 2.3.2.1293-03 «Гигиенические требования по применению пищевых добавок: Санитарно-эпидемиологические правила и нормативы»
61. Сарафанова Л.А. Применение пищевых добавок. Технические рекомендации. – 6-е изд. – СПб.: ГИОРД, 2005. – 378с.
62. Сарафанова Л.А. Пищевые добавки: Энциклопедия. М.: Санкт-Петербург; ГИОРД, 2014. 542с.
63. Сарафанова Л.А. Применение пищевых добавок. Технические рекомендации. 6-е изд., испр. и доп. М.: Санкт-Петербург, ГИОРД, 2005. 94-104 с.
64. Сарафанова Л.А. Применение пищевых добавок в переработке мяса и рыбы. М.: Санкт-Петербург; Профессия, 2013. 107с.
65. Скурихин И.М Химический состав пищевых продуктов: справочник. – Т. 1, 2. – М.: Агропромиздат, 1987.
66. Скурихин И.М. Все о пище с точки зрения химика / И.М. Скурихин, П.П. Нечаев. – М.: Высшая школа, 1991. – 387 с.
67. Скурихин И.М. Таблицы химического состава и калорийности российских продуктов питания / И.М. Скурихин,, В.А. Тутельян. – М.: ДеЛипринт, 2007 – 276с.
68. Токаев Э.С. Фибрегам – пищевой компонент нового поколения. Пищевые ингредиенты : сырье и добавки. №1, 2006.-с.16-19
69. Устинова. А.В. Функциональные продукты на мясной основе. М: Кемерово; КемТИПП , 2011. 71с.
70. Bucke, F.K.; Hecheimann, A. Cultivos starter para embutido seco y jamon crudo: composicion y efecto. Fleischwirtschaft, 1: 38-48, 1988.
71. Coventry, J.M.; Hichey, W.M. The effects of spices and manganese on meat starter culture activity. Meat Sci., 33: 391-399, 1993.
72. Erichsen, I. Fermented fish and meat products. In: Roberts, T.A.; Skiner, F.A. (eds.). Food microbiology: advances and prospects, Academic Press, London, 1983.
73. Farrior, J.W.; Kloos, W. Aminoacid and vitamin requeriments of micrococcus species isolated from human skin. Intern. J. System. Bacteriol., 25: 80-82, 1975.
74. Garcia, L.M.; Selgas, D.M.; Fernandez, M.; Ordonez, J.A. Microorganisms and lipolysis in the rippening of dry fermented sausage. Intern. J. Food Sci. Technol., 27: 675-682, 1992.
75. Houle, J.F.; Lafrance, M.; Julien, J. P.; Brochu, E.; Champagne, C.P. Selection of mixed cultures for meat fermentation. J. Food Sci., 54: 839-842, 1989.
76. Jessen, B. Starters cultures for meat fermentations.In: Fermented Meats. 1995, p.131-159.
77. Kanasaki, M.; Breheny, S.; Hillier, A.J.; Jago, G.R. Effect of temperature on the growth and acid production of lactic acid bacteria. Austr. J. Food Protect., p.142-144, 1975.
78. Liepe, H.U. Starter cultures in meat production.Biotechnology, v. 5, 1983, p.400-424.
79. Novoa, M.A.O.; Palacios, C.A.M.; Leon, E.R.M. In: Manual de tecnicas para laboratorio de nutricion de peces y crustaceos. FAO, Mexico, 1993. p.33-35.
80. Nychas, G.J.E.; Arkoudelos, J.S. Staphylococci the role in fermentaton sausage. J. Appl. Bacteriol., p. 167S-188S, 1990.
81. Smith, J.L; Palumbo, S.A. Use of starter culture in meats.J. Food Protect., 46(11): 997-1006, 1983.
82. Talon, R.; Montel, M.C.; Gandemer, G. et alii. Lipolysis of pork fat by Staphylococcus warneri, Staphylococcus saprophyticus and Micrococcus varians. Appl. Microbiol. Biotechnol., 38: 606-609, 1993.
83. Torriani, S.; Dellaglio, R.; Di Bucchianico, R. et alii. Use the selected starter cultures in the of traditional abruzzo salami. Italian J. Food Sci.,7(2): 113-123, 1995.
84. Katagiri H., Kitahara K., Fukami K. The characteristics of the lactic acid bacteria isolated from moto, yeast mashes for sake? manufacture. IV. Classification of the lactic acid bacteria. Bull. Agric. Chem. Soc. 1934;10:156–157. doi: 10.1271/bbb1924.10.156.
85. Moroni A.V., Arendt E.K., Dal Bello F. Biodiversity of lactic acid bacteria and yeasts in spontaneously-fermented buckwheat and teff sourdoughs. Food Microbiol. 2011;28:497–502. doi: 10.1016/j.fm.2010.10.016.
86. Lhomme E., Mezaize S., Bonnand Ducasse M., Chiron H., Champomier-Verges M.C., Chaillou S., Zagorec M., Dousset X., Onno B. A polyphasic approach to study the dynamics of microbial population of an organic wheat sourdough during its conversion to gluten-free sourdough. Int. Microbiol. 2014;17:1–9.
87. Jung J.Y., Lee S.H., Jeon C.O. Kimchi microflora: History, Current Status, and Perspectives for Industrial Kimchi Production.Appl. Microbiol. Biotechnol. 2014;98:2385–2393. doi: 10.1007/s00253-014-5513-1.
88. Coda R., Kianjam M., Pontonio E., Verni M., Di Cagno R., Katina K., Rizzello C.G., Gobbetti M. Sourdough-type propagation of faba bean flour: Dynamics of Microbial Consortia and Biochemical Implications. Int. J. Food Microbiol. 2017;248:10–21. doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2017.02.009.
89. 6. Chaillou S., Chaulot-Talmon A., Caekebeke H., Cardinal M., Christieans S., Denis C., Desmonts M.H., Dousset X., Feurer C., Hamon E., et al. Origin and ecological selection of core and food-specific bacterial communities associated with meat and seafood spoilage. ISME J. 2015;9:1105–1118. doi: 10.1038/ismej.2014.202.
90. Najjari A., Ouzari I., Boudabous A., Zagorec M. Method for reliable isolation of a collection of Lactobacillus sakei strains originating from Tunisian seafood and meat products. Int. J. Food Microbiol. 2008;121:342–351. doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2007.11.045.
91. Lucquin I., Zagorec M., Champomier-Verges M.C., Chaillou S. Taxonomic structure of lactic acid bacteria community in non-fermented beef meat ecosystems and natural population dynamic of the meat starter species Lactobacillus sakei assessed by genotype fingerprinting. Food Microbiol. 2012;29:187–196. doi: 10.1016/j.fm.2011.08.001.
92. Dal Bello F., Walter J., Hammes W., Hertel C. Increased complexity of the species composition of lactic acid bacteria in human feces revealed by alternative incubation condition.Microb. Ecol. 2003;45:455–463. doi: 10.1007/s00248-003-2001-z.
93. Chiaramonte F., Blugeon S., Chaillou S., Langella P., Zagorec M. Behavior of the meat-borne bacterium Lactobacillus sakei during its transit through the gastrointestinal tracts of axenic and conventional mice. Appl. Environ. Microbiol. 2009;75:4498–4505. doi: 10.1128/AEM.02868-08
94. Chiaramonte F., Anglade P., Baraige F., Langella P., Champomier-Verges M.C., Zagorec M. Characteristics of Lactobacillus sakei mutants selected by adaptation to the gastrointestinal tract of axenic mice. Appl. Environ. Microbiol. 2010;76:2932–2939. doi: 10.1128/AEM.02451-09.
95. Chaillou S., Champomier-Verges M.C., Cornet M., Crutz Le Coq A.M., Dudez A.M., Martin V., Beaufils S., Bossy R., Darbon-Rongere E., Loux V., et al. Complete genome sequence of the meat-borne lactic acid bacterium Lactobacillus sakei 23K. Nat. Biotechnol. 2005;23:1527–1533. doi: 10.1038/nbt1160
96. McLeod A., Brede D.A., Rud I., Axelsson L. Genome sequence of Lactobacillus sakei subsp. sakeiLS25, a commercial starter culture strain for fermented sausage. Genome Announc. 2013;1:e00475-13.
97. Lim H.I., Lee J., Jang J.Y., Park H.W., Choi H.J., Kim T.W., Kang M.R., Lee J.H. Draft genome sequence of Lactobacillus sakei strain wikim 22, isolated from kimchi in Chungcheong Province, South Korea. Genome Announc. 2014;2:e01296-14. doi: 10.1128/genomeA.01296-
98. Kim J.H., Kim E., Kim C.G., Choo D.W., Kim H.Y. Draft genome sequence of Lactobacillus sakeistrain FBL1, a probiotic bacterium isolated from mukeunji, a long-fermented kimchi, in South Korea. Genome Announc. 2016;4:e00365-16. doi: 10.1128/genomeA.00365-16.
99. McLeod A., Nyquist O.L., Snipen L., Naterstad K., Axelsson L. Diversity of Lactobacillus sakei strains investigated by phenotypic and genotypic methods. Syst. Appl. Microbiol. 2008;31:393–403. doi: 10.1016/j.syapm.2008.06.002.
100. Chaillou S., Daty M., Baraige F., Dudez A.M., Anglade P., Jones R., Alpert C.-A., Champomier-Verges M.C., Zagorec M. Intra-species genomic diversity and natural population structure of the meat-borne lactic acid bacterium Lactobacillus sakei. Appl. Environ. Microbiol. 2009;75:970–980. doi: 10.1128/AEM.01721-08.
101. Nyquist O.L., McLeod A., Brede D.A., Snipen L., Aakra A., Nes I.F. Comparative genomics of Lactobacillus sakei with emphasis on strains from meat. Mol. Genet. Genom. 2011;285:297–311. doi: 10.1007/s00438-011-0608-1.
102. Chaillou S., Lucquin I., Najjari A., Zagorec M., Champomier-Verges M.C. Population genetics of Lactobacillus sakei reveals three lineages with distinct evolutionary histories. PLoS ONE. 2013;8:e73253. doi: 10.1371/journal.pone.0073253.
103. Lauret R., Morel-Deville F., Berthier F., Champomier-Verges M., Postma P., Ehrlich S.D., Zagorec M. Carbohydrate utilization in Lactobacillus sake. Appl. Environ. Microbiol. 1996;62:1922–1927.
104. Xu H.Q., Gao L., Jiang Y.S., Tian Y., Peng J., Xa Q.Q., Chen Y. Transcriptome response of Lactobacillus sakei to meat protein environment. J. Basic Microbiol. 2015;55:490–499. doi: 10.1002/jobm.201400540.
105. Fadda S., Anglade P., Baraige F., Zagorec M., Talon R., Vignolo G., Champomier-Verges M.C. Adaptive response of Lactobacillus sakei 23K during growth in the presence of meat extracts: A proteomic approach. Int. J. Food Microbiol. 2010;142:36–43. doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2010.05.014.
106. Aristoy M.C., Toldra F. Concentration of free amino acids and dipeptides in porcine skeletal muscles with different oxidative patterns. Meat Sci. 1998;50:327–332. doi: 10.1016/S0309-1740(98)00037-0.
107. Zuniga M., Champomier-Verges M.C., Zagorec M., Perez-Martinez G. Structural and functional analysis of the gene cluster encoding the enzymes of the arginine deiminase pathway of Lactobacillus sake. J. Bacteriol. 1998;180:4154–4159.
108. Zuniga M., Miralles M.C., Perez-Martinez G. The product of arcR, the sixth gene of the arc operon of Lactobacillus sakei, is essential for expression of the arginine deiminase pathway. Appl. Environ. Microbiol. 2002;68:6051–6058. doi: 10.1128/AEM.68.12.6051-6058.2002.
109. Rimaux T., Riviere A., Hebert E.M., Mozzi F., Weckx S., De Vuyst L., Leroy F. A putative transport protein is involved in citrulline excretion and re-uptake during arginine deiminase pathway activity by Lactobacillus sakei. Res. Microbiol. 2013;164:216–225. doi: 10.1016/j.resmic.2012.11.004.
110. Bucke, F.K.; Hecheimann, A. Cultivos starter para embutido seco y jamon crudo: composicion y efecto. Fleischwirtschaft, 1: 38-48, 1988.
111. Coventry, J.M.; Hichey, W.M. The effects of spices and manganese on meat starter culture activity. Meat Sci., 33: 391-399, 1993.
112. Erichsen, I. Fermented fish and meat products. In: Roberts, T.A.; Skiner, F.A. (eds.). Food microbiology: advances and prospects, Academic Press, London, 1983.
113. Farrior, J.W.; Kloos, W. Aminoacid and vitamin requeriments of micrococcus species isolated from human skin. Intern. J. System. Bacteriol., 25: 80-82, 1975.
114. Garcia, L.M.; Selgas, D.M.; Fernandez, M.; Ordonez, J.A. Microorganisms and lipolysis in the rippening of dry fermented sausage. Intern. J. Food Sci. Technol., 27: 675-682, 1992.
115. Houle, J.F.; Lafrance, M.; Julien, J. P.; Brochu, E.; Champagne, C.P. Selection of mixed cultures for meat fermentation. J. Food Sci., 54: 839-842, 1989.
116. Jessen, B. Starters cultures for meat fermentations. In: Fermented Meats. 1995, p.131-159.
117. Kanasaki, M.; Breheny, S.; Hillier, A.J.; Jago, G.R. Effect of temperature on the growth and acid production of lactic acid bacteria. Austr. J. Food Protect., p.142-144, 1975.
118. Liepe, H.U. Starter cultures in meat production.Biotechnology, v. 5, 1983, p.400-424.
119. Novoa, M.A.O.; Palacios, C.A.M.; Leon, E.R.M. In: Manual de tecnicas para laboratorio de nutricion de peces y crustaceos. FAO, Mexico, 1993. p.33-35.
120. Nychas, G.J.E.; Arkoudelos, J.S. Staphylococci the role in fermentaton sausage. J. Appl. Bacteriol., p. 167S-188S, 1990.
121. Smith, J.L; Palumbo, S.A. Use of starter culture in meats. J. Food Protect., 46(11): 997-1006, 1983.
122. Talon, R.; Montel, M.C.; Gandemer, G. et alii. Lipolysis of pork fat by Staphylococcus warneri, Staphylococcus saprophyticus and Micrococcus varians. Appl. Microbiol. Biotechnol., 38: 606-609, 1993.
123. Torriani, S.; Dellaglio, R.; Di Bucchianico, R. et alii. Use the selected starter cultures in the of traditional abruzzo salami. Italian J. Food Sci.,7(2): 113-123, 1995.
124. Katagiri H., Kitahara K., Fukami K. The characteristics of the lactic acid bacteria isolated from moto, yeast mashes for sake? manufacture. IV. Classification of the lactic acid bacteria. Bull. Agric. Chem. Soc. 1934;10:156–157. doi: 10.1271/bbb1924.10.156.
125. Moroni A.V., Arendt E.K., Dal Bello F. Biodiversity of lactic acid bacteria and yeasts in spontaneously-fermented buckwheat and teff sourdoughs. Food Microbiol. 2011;28:497–502. doi: 10.1016/j.fm.2010.10.016.
126. Lhomme E., Mezaize S., Bonnand Ducasse M., Chiron H., Champomier-Verges M.C., Chaillou S., Zagorec M., Dousset X., Onno B. A polyphasic approach to study the dynamics of microbial population of an organic wheat sourdough during its conversion to gluten-free sourdough. Int. Microbiol. 2014;17:1–9.
127. Jung J.Y., Lee S.H., Jeon C.O. Kimchi microflora: History, Current Status, and Perspectives for Industrial Kimchi Production. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2014;98:2385–2393. doi: 10.1007/s00253-014-5513-1.
128. Coda R., Kianjam M., Pontonio E., Verni M., Di Cagno R., Katina K., Rizzello C.G., Gobbetti M. Sourdough-type propagation of faba bean flour: Dynamics of Microbial Consortia and Biochemical Implications. Int. J. Food Microbiol. 2017;248:10–21. doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2017.02.009.
129. Chaillou S., Chaulot-Talmon A., Caekebeke H., Cardinal M., Christieans S., Denis C., Desmonts M.H., Dousset X., Feurer C., Hamon E., et al. Origin and ecological selection of core and food-specific bacterial communities associated with meat and seafood spoilage. ISME J. 2015;9:1105–1118. doi: 10.1038/ismej.2014.202.
130. Najjari A., Ouzari I., Boudabous A., Zagorec M. Method for reliable isolation of a collection of Lactobacillus sakei strains originating from Tunisian seafood and meat products. Int. J. Food Microbiol. 2008;121:342–351. doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2007.11.045.
131. Lucquin I., Zagorec M., Champomier-Verges M.C., Chaillou S. Taxonomic structure of lactic acid bacteria community in non-fermented beef meat ecosystems and natural population dynamic of the meat starter species Lactobacillus sakei assessed by genotype fingerprinting. Food Microbiol. 2012;29:187–196. doi: 10.1016/j.fm.2011.08.001.
132. Dal Bello F., Walter J., Hammes W., Hertel C. Increased complexity of the species composition of lactic acid bacteria in human feces revealed by alternative incubation condition. Microb. Ecol. 2003;45:455–463. doi: 10.1007/s00248-003-2001-z.
133. Chiaramonte F., Blugeon S., Chaillou S., Langella P., Zagorec M. Behavior of the meat-borne bacterium Lactobacillus sakei during its transit through the gastrointestinal tracts of axenic and conventional mice. Appl. Environ. Microbiol. 2009;75:4498–4505. doi: 10.1128/AEM.02868-08
134. Chiaramonte F., Anglade P., Baraige F., Langella P., Champomier-Verges M.C., Zagorec M. Characteristics of Lactobacillus sakei mutants selected by adaptation to the gastrointestinal tract of axenic mice. Appl. Environ. Microbiol. 2010;76:2932–2939. doi: 10.1128/AEM.02451-09.
135. Chaillou S., Champomier-Verges M.C., Cornet M., Crutz Le Coq A.M., Dudez A.M., Martin V., Beaufils S., Bossy R., Darbon-Rongere E., Loux V., et al. Complete genome sequence of the meat-borne lactic acid bacterium Lactobacillus sakei 23K. Nat. Biotechnol. 2005;23:1527–1533. doi: 10.1038/nbt1160
136. McLeod A., Brede D.A., Rud I., Axelsson L. Genome sequence of Lactobacillus sakei subsp. sakeiLS25, a commercial starter culture strain for fermented sausage. Genome Announc. 2013;1:e00475-13.
137. Lim H.I., Lee J., Jang J.Y., Park H.W., Choi H.J., Kim T.W., Kang M.R., Lee J.H. Draft genome sequence of Lactobacillus sakei strain wikim 22, isolated from kimchi in Chungcheong Province, South Korea. Genome Announc. 2014;2:e01296-14. doi: 10.1128/genomeA.01296
138. Kim J.H., Kim E., Kim C.G., Choo D.W., Kim H.Y. Draft genome sequence of Lactobacillus sakeistrain FBL1, a probiotic bacterium isolated from mukeunji, a long-fermented kimchi, in South Korea. Genome Announc. 2016;4:e00365-16. doi: 10.1128/genomeA.00365-16.
139. McLeod A., Nyquist O.L., Snipen L., Naterstad K., Axelsson L. Diversity of Lactobacillus sakei strains investigated by phenotypic and genotypic methods. Syst. Appl. Microbiol. 2008;31:393–403. doi: 10.1016/j.syapm.2008.06.002.
140. Chaillou S., Daty M., Baraige F., Dudez A.M., Anglade P., Jones R., Alpert C.-A., Champomier-Verges M.C., Zagorec M. Intra-species genomic diversity and natural population structure of the meat-borne lactic acid bacterium Lactobacillus sakei. Appl. Environ. Microbiol. 2009;75:970–980. doi: 10.1128/AEM.01721-08.
141. Nyquist O.L., McLeod A., Brede D.A., Snipen L., Aakra A., Nes I.F. Comparative genomics of Lactobacillus sakei with emphasis on strains from meat. Mol. Genet. Genom. 2011;285:297–311. doi: 10.1007/s00438-011-0608-1.
142. Chaillou S., Lucquin I., Najjari A., Zagorec M., Champomier-Verges M.C. Population genetics of Lactobacillus sakei reveals three lineages with distinct evolutionary histories. PLoS ONE. 2013;8:e73253. doi: 10.1371/journal.pone.0073253.
143. Lauret R., Morel-Deville F., Berthier F., Champomier-Verges M., Postma P., Ehrlich S.D., Zagorec M. Carbohydrate utilization in Lactobacillus sake. Appl. Environ. Microbiol. 1996;62:1922–1927.
144. Xu H.Q., Gao L., Jiang Y.S., Tian Y., Peng J., Xa Q.Q., Chen Y. Transcriptome response of Lactobacillus sakei to meat protein environment. J. Basic Microbiol. 2015;55:490–499. doi: 10.1002/jobm.201400540.
145. Fadda S., Anglade P., Baraige F., Zagorec M., Talon R., Vignolo G., Champomier-Verges M.C. Adaptive response of Lactobacillus sakei 23K during growth in the presence of meat extracts: A proteomic approach. Int. J. Food Microbiol. 2010;142:36–43. doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2010.05.014.
146. Aristoy M.C., Toldra F. Concentration of free amino acids and dipeptides in porcine skeletal muscles with different oxidative patterns. Meat Sci. 1998;50:327–332. doi: 10.1016/S0309-1740(98)00037-0.
147. Zuniga M., Champomier-Verges M.C., Zagorec M., Perez-Martinez G. Structural and functional analysis of the gene cluster encoding the enzymes of the arginine deiminase pathway of Lactobacillus sake. J. Bacteriol. 1998;180:4154–4159.
148. Zuniga M., Miralles M.C., Perez-Martinez G. The product of arcR, the sixth gene of the arc operon of Lactobacillus sakei, is essential for expression of the arginine deiminase pathway. Appl. Environ. Microbiol. 2002;68:6051–6058. doi: 10.1128/AEM.68.12.6051-6058.2002.
149. Rimaux T., Riviere A., Hebert E.M., Mozzi F., Weckx S., De Vuyst L., Leroy F. A putative transport protein is involved in citrulline excretion and re-uptake during arginine deiminase pathway activity by Lactobacillus sakei. Res. Microbiol. 2013;164:216–225. doi: 10.1016/j.resmic.2012.11.004.