Войти в мой кабинет
Регистрация
ГОТОВЫЕ РАБОТЫ / ДИПЛОМНАЯ РАБОТА, БИОЛОГИЯ

Биологическая характеристика рипуса в связи со средой обитания и образом жизни.

irina_krut2019 1575 руб. КУПИТЬ ЭТУ РАБОТУ
Страниц: 63 Заказ написания работы может стоить дешевле
Оригинальность: неизвестно После покупки вы можете повысить уникальность этой работы до 80-100% с помощью сервиса
Размещено: 15.01.2020
Мировой океан, занимающий 3/4 поверхности Земли и давший начало органической жизни, очень часто сравнивают с основным хранилищем богатств нашей планеты. Суммарную ежегодную рыбопродукцию Мирового океана предполагают на уровне до 4 млрд. тонн. Общую продукцию фитопланктона - до 1210 млрд. тонн, а зоопланктона - 40 млрд. тонн. Правда, оценки, приводимые разными исследователями, иногда отличаются на порядок (Моисеев, 1989). Таким образом в 2015 г. ресурсная база российского рыболовства сохранялась на уровне 2014 г., с незначительной тенденцией к увеличению: 7 млн 484 тыс.т в 2015 г. против 7 млн 403 тыс.т в 2014 г. При этом, ресурсы в водах российской юрисдикции незначительно увеличились с 4 млн 734 тыс.т до 4 млн 781,7 тыс.т (на 47,7 тыс.т; 1,0%). Параллельно с этим, сырьевая база российского рыболовства за пределами российской юрисдикции также незначительно возрасла с 2 млн 669 тыс.т в 2014 г. до 2 млн 702 тыс.т (на 33 7 тыс.т или на 1,2%), обеспечивая стабильность российского рыболовства в 2015 году (www.iep.ru). В связи с этим, целью курсовой работы является изучить биологические особенности рипуса в связи с его искусственным разведением. Поставленная цель определила следующие задачи: -изучить биологическую характеристику рипуса; -рассмотреть влияние различных факторов среды на рипуса; -изучить управление половыми циклами у рипуса различными методами; -изучить биологические основы кормления рипуса; - определить способы транспортировки икры, личинок, молоди и взрослых особей рипуса; - изучить биологические основы акклиматизации рипуса.
Введение

Россия, обладая значительным морским побережьем, а также громадным водным потенциалом внутренних водоемов, всегда являлась ведущей рыбохозяйственной державой в мире. В современных условиях, когда уловы океанической рыбы и других морепродуктов сокращаются, а рыбные запасы внутренних водоемов находятся в критическом состоянии, поддерживаются в основном за счет искусственного воспроизводства, единственным надёжным источником увеличения объемов пищевой рыбопродукции является аквакультура (Привезенцев, 1991). По официальным данным ФАО, в 2002 г. общий мировой вылов всех водных организмов, включая аквакультуру, составил 146 млн. т, в том числе промысел – 94,6 млн. т и аквакультура – 51,4 млн. т. Если объем промысла сохраняется в последние годы практически на одном уровне, то, по сравнению с 1990г., объем продукции аквакультуры увеличился на 35 млн. т. При этом следует особо отметить, что весь объем приходится на пищевую продукцию, реализуемую в основном в живом и охлажденном виде. По оценкам ФАО, аквакультура – самая динамично развивающаяся отрасль производства продуктов питания. Высокие репродуктивные возможности рыб, быстрый рост при невысоких кормовых затратах, наличие в хозяйствах достаточного маточного поголовья, производство рыбы в местах ее потребления и независимо от внешнеполитических ситуаций позволяет уже в течение ближайших лет резко увеличивать объемы её выращивания (http://aquacultura.org). Все изложенное убедительно свидетельствует о достоинствах и несомненных преимуществах аквакультуры. Можно с уверенностью утверждать, что аквакультура в России, в частности рыбоводство, имеет не только давние и глубокие корни, но и большие перспективы развития. Аквакультура имеет два основных направления. Первое – товарная 4 аквакультура, у нас это товарное пресноводное рыбоводство. И второе – искусственное воспроизводство ценных видов рыб. Учитывая, что объемы продукции морской аквакультуры у нас еще крайне незначительны, хотя перспективы огромные, основное внимание уделяют пресноводному рыбоводству и искусственному воспроизводству. После распада СССР Россия оказалась самым крупным производителем продукции товарной аквакультуры. Однако и российские предприятия не миновал спад производства. Однако в 1997 г. этот спад удалось остановить, и наметились определенные тенденции для роста производства товарной рыбы. В 2002 г. хозяйствах было выращено более 101 тыс.т товарной рыбы и 600 млн. шт. посадочного материала различных видов рыб (http://aquacultura.org). Помимо товарного рыбоводства важнейшее значение в отечественной аквакультуре имеет искусственное воспроизводство гидробионтов. Именно за счет искусственного воспроизводства во всем мире обеспечивается выращивание многих миллионов тонн морской, пресноводной рыбы и беспозвоночных. Россия обладает отлаженной системой воспроизводства рыбных запасов. В стране насчитывается более 150 рыбоводных предприятий, занимающихся получением и выпуском молоди осетровых, лососевых, сиговых, частиковых и других видов рыб. Основную роль в этой работе выполняют рыборазводные предприятия и организации Росрыбхоза и Госкомрыболовства России, ежегодного выпускающие во внутренние водоемы страны 7-8 млрд. экз. молоди и личинок ценных промысловых рыб. Громадная площадь водохранилищ, водоемов комплексного назначения, значительный прудовый фонд, большое число хозяйств индустриального типа, отработанные технологии культивирования гидробионтов, наличие квалифицированных специалистов - все это является основой для увеличения продукции в России. Развитие аквакультуры должно постоянно сопровождаться проведением прикладных исследований в области 5 кормления и технологий выращивания рыб, генетики и селекции, поддерживания нормального физиологического состояния культивируемых объектов. Знание биологии закономерностей воспроизводства рыб в равной степени необходимо как при разработке мероприятий по охране и рациональной эксплуатации, так и при подборе базовых для рыбоводства популяций и стад. Естественно, что и выбор водоемов для интродукции и акклиматизации новых видов, для организации интенсивных форм хозяйства (например, товарного рыбоводства) нельзя сделать без глубокого знания биологии разводимых видов (Мухачев, 2005). Концепция развития рыбного хозяйства Российской Федерации на период до 2020 года определяет основные направления формирования единой государственной политики в области развития отрасли на долгосрочный период. В Концепции сформулированы цели, задачи, направления и способы обеспечения интересов России в сфере эффективного использования, охраны и воспроизводства водных биологических ресурсов и повышения конкурентоспособности рыбной продукции. Основными задачами являются: создание условий для повышения эффективности рыборазведения водных биологических ресурсов, в том числе для обеспечения интересов Российской Федерации в области рыболовства на международном уровне; восстановление и сохранение ресурсно-сырьевой базы рыболовства, в том числе путем искусственного воспроизводства водных биологических ресурсов и стимулирования развития аквакультуры; расширение проведения научных исследований и разработок, в том числе экосистемных, развитие научно-технического потенциала рыбохозяйственного комплекса; формирование условий для обеспечения законного и безопасного промысла водных биологических ресурсов; стимулирование модернизации основных производственных фондов в рыбохозяйственном комплексе; совершенствование управления реализацией 6 программы; инфраструктурное обеспечение инновационного развития рыбохозяйственного комплекса; восстановление и сохранение ресурсно-сырьевой базы осетровых видов рыб (Стратегия развития рыбного хозяйства, 2015). Ожидаемые результаты реализации программы - увеличение объема добычи (вылова) водных биологических ресурсов к 2020 году на 3,8 процента по отношению к базовому периоду; повышение к 2020 году удельного веса отечественной пищевой рыбной продукции на внутреннем рынке до 80 процентов; повышение к 2020 году объема производства продукции товарной аквакультуры к базовому периоду на 103 процента; увеличение к 2020 году объема оцененного потенциала сырьевой базы водных биологических ресурсов до 5,45 млн. тонн; обеспечение к 2020 году среднедушевого потребления рыбы и рыбопродуктов населением Российской Федерации (в рыбе-сырце) на уровне не ниже 22,7 килограмма (www.iep.ru).
Содержание

ВВЕДЕНИЕ 9 ГЛАВА 1. биологическая характеристика рипуса в связи со средой обитания и образом жизни 1.1 ОБЩАЯ БИОЛОГИЯ ВИДА 1.2 ЭМБРИОНАЛЬНОЕ РАЗВИТИЕ 1.3. ПОСТЭМБРИОНАЛЬНОЕ РАЗВИТИЕ ГЛАВА 2. ВЛИЯНИЕ РАЗЛИЧНЫХ ФАКТОРОВ СРЕДЫ НА РИПУСА 2.1 ВЛИЯНИЕ ПАРАМЕТРОВ ВОДНОЙ СРЕДЫ (ТЕМПЕРАТУРА,ГИДРОХИМИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ) 2.2 ВЛИЯНИЕ ОСВЕЩЕННОСТИ,УРОВНЯ И ТЕЧЕНИЯ ВОДЫ НА РИПУСА ГЛАВА 3. УПРАВЛЕНИЕ ПОЛОВЫМИ ЦИКЛАМИ У РИПУСА РАЗЛИЧНЫМИ МЕТОДАМИ ГЛАВА 4 БИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСНОВЫ КОРМЛЕНИЯ РИПУСА ГЛАВА 5 ТРАНСПОРТИРОВКА ИКРЫ, ЛИЧИНОК, МОЛОДИ И ВЗРОСЛЫХ ОСОБЕЙ РИПУСА ГЛАВА 6 БИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСНОВЫ АККЛИМАТИЗАЦИИ БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК
Список литературы

1.Богданов В.Д. Морфологические особенности развития и определитель личинок сиговых рыб р. Оби // Екатеринбург: УрО РАН, 1998. 2.Вавилкин А. С., Иванов А. П., Куранова И. И. Основы ихтиологии и рыбоводства. М.: Агропромиздат, 1985. – 184 с. 3.Гидрохимические и гидробиологические исследования Хантайского водохранилища / В.В. Дрюккер, В.М. Домышева, Н.Г. Шевелева и др. Новосибирск: Наука, 1986. 120 с 4.Зайцев В. Ф. Корма и их использование в рыбоводстве: Учебное пособие. Дальнерыбтуз; АТИРПИХ – Владивосток: 1988. – 79 с. 5.Иванов А. П. Рыбоводство в естественных водоемах. – М.: Агропромиздат, 1988. - 368 с. 6.Исаев А. И., Карпова Е. И. Рыбоводство на внутренних водоёмах. – М.: Агропромиздат, 1991. – 93 с. 7.Карпевич А.Ф. Акклиматизация рыб и беспозвоночных в водоемах СССР М. Наука 1968 г. – С. 239-240; 8.Кудерский Л. А. Акклиматизация рыб водоемах России // Состояние и пути развития: Институт озероведения РАН, Санкт- Петербург. – 2001. – с. 12-14; 9.Карманова О.Г., Романов В.И. Состояние некоторых биологических показателей промысловых рыб Хантайского водохранилища в период стабилизации / Экология пойм сибирских рек и Арктики. II Совещание (24-26 нояб. 2000 г.). - Томск, 2000. С. 31 -32. 10.Лебедева О.А. Сравнительная характеристика раннего онтогенеза сиговых рыб // Природа и хозяйственное использование озер северо-запада Русской равнины. Л., 1976. Т. 1. С. 3 – 57 с. 65 11.Мешков М.М., Лебедева О.А. Видовая специфика темпа индивидуаль-ного развития лососевидных рыб (Salmonoidei) // Эволюция темпов индивидуального развития животных. М., 1977. С. 200-216. 12.Моисеев П.А. Биологические ресурсы Мирового океана./ М. : Агропромиздат, 1989 .- 16 с. 13.Мухачёв И. С. Биологические основы рыбоводства: учебное пособие. Министерство образования и науки РФ, Тюмень: издательство Тюмень, 2005. – 300 с. 14. Малолетко A.M. Высшие водные растения // Природа Хантайской гидросистемы. Томск: Изд-во Томск, ун-та, 1988. 179-183. 15.Привезенцев Ю. А. Интенсивное прудовое рыбоводство. М.: «Агропромиздат», 1991. – 368 с. 16.Пономарёв С. В., Пономарева Е. Н. Аквакультура – Астрахань: Нова, 2003. – 264 с. 17..Потапова О. И. Крупный рипус. – М.: Агропромиздат, 1978. – 114с. 18. Приказ Федерального агентства по рыболовству от 30 марта 2015 г. № 246 "Об утверждении Стратегии развития рыбохозяйственного комплекса Российской Федерации до 2020 года 19.Решетников Ю.С. Сиговые рыбы в северных экосистемах // Вопросы ихтиологии. 1979. Т. 19. вып. 3(116). 419-433. 20. Романов В.И. Ихтиофауна // Природа Хантайской гидросистемы. Томск: Изд-во Томск, ун-та, 1988. 199-236. 21.Черняев Ж. А. Методические указания по сбору и хранению икры сиговых рыб на временных рыбоводных пунктах, её транспортировке и инкубации. – М: Пищевая промышленность, 1987. – 81 с. 22.Черняев Ж.А. Размножение и развитие байкальского озерного сига Coregonus lavaretus Dyb. в связи с вопросом его искусственного разведения// Вопр. ихтиологии. 1973. Т. 13, вып. 2. стр. 252-274. 66 23.Шевелева Н.Г. Зоопланктон Хантайской гидросистемы // Методы комплексных исследований сложных гидросистем. Томск: Изд-во Томск, ун-та, 1980. 59-71 24.Шевелева Н.Г. Зоопланктон // Природа Хантайской гидросистемы. Томск: Изд-во Томск, ун-та, 1988. 183-191. 25.www.iep.ru 26.http://agro365.ru/ripus.html 27.http://aquacultura.org 28.https://studfiles.net/preview/2983762/page:16/
Отрывок из работы

ГЛАВА 1. биологическая характеристика рипуса в связи со средой обитания и образом жизни 1.1 ОБЩАЯ БИОЛОГИЯ ВИДА Царство: Animalia (Животные) Подцарство: Eumetazoa (Эуметазои или настоящие многоклеточные) Раздел: Bilateria (Двусторонне-симметричные, билатеральные) Подраздел: Deuterostomia (Вторичноротые) Надтип/Надотдел: Chordaria (Хордарии) Тип/Отдел: Chordata (Хордовые) Подтип/Подотдел: Vertebrata (Позвоночные, или Черепные) Надкласс: Pisces (Рыбы) Надкласс: Osteichthyes (Костные рыбы) Класс: Actinopterygii (Лучеперые рыбы) Подкласс: Neopterygii (Новоперые рыбы) Инфракласс: Teleostei (Костистые рыбы) Надотряд/Надпорядок: Protacanthopterygii Отряд/Порядок: Salmoniformes (Лососеобразные) Семейство: Salmonidae (Лососевые) Подсемейство: Coregoninae (Сиговые) Род: Coregonus (Сиги) Вид: Coregonus albula (Ряпушка европейская) Подвид: Coregonus albula ladogensis (Рипус) (рис.1) Рисунок 1- Рипус 10 Рипус – это крупный подвид европейской ряпушки, её относят к семейству лососёвых. Тело стройное, темно — зеленая спина, серебристые бока и светлое брюхо. Длина тела около 40 см, вес до 500 грамм. Обитает рипус в Ладожском, Онежском, Чудском, Селигер озерах, а так же в озерах Карелии. Рипус распространен в Ладожском озере и в озерах Свердловской и Челябинской областей, где он акклиматизирован. Средняя масса его здесь на первом году жизни составляет 70 грамм, на втором 150 грамм, на третьем – около 300 грамм. Питается в основном зоопланктоном, за счет использования которого резко повышает естественную рыбопродуктивность нагульных и выростных карповых прудов. Отличается рыба рипус высокими пищевыми и вкусовыми качествами ( http://agro365.ru/ripus.html). Основное отличие рипуса от ряпушки заключается в их размерах: рипус растет в 2 раза быстрее ряпушки. Отмечена высокая приспособляемость ряпушки и рипуса к условиям жизни в прудах: из икринок к концу вегетационного периода ряпушка и рипус вырастают до такой же массы, какой они достигают в промысловом трехлетием возрасте в материнских водоемах. Нерестится рыба рипус в 3 летнем возрасте, в конце осени и начале зимы. На нерест выходит на мелководные участки, не более 1,5 метров глубины. Плодовитость нереста составляет до 3 тыс. икринок. Икра развивается несколько месяцев, до начала весны. Икра у рипуса мелкая и в грунт не зарывается. Изменение условий среды в период инкубации, перевозки икры, развитие рыбы и мальков в новых водоемах и в особенности в озерах Таватуй и Шарташ Свердловской области, где рипус имел благоприятные условия для роста, способствовали изменению природы рипуса в сторону наследственного увеличения роста, скороспелости и плодовитости, увеличившейся в 3 раза. В Ладожском озере рипус становится половозрелым только на 3-м году жизни, а в уральских озерах — на 2-м году жизни. 11 При искусственным разведением ладожский рипус становится полузрелым в два года при условии, если сеголетки имели массу не менее 20 грамм. Плодовитость его по сравнению с исходной формой в Ладожском озере повышается практически в 5 раз. От двухгодовалого рипуса получают 8-10 тысяч икринок ( http://agro365.ru/ripus.html). 1.2 ЭМБРИОНАЛЬНОЕ РАЗВИТИЕ Эмбриональный период развития протекает с момента оплодотворения икринки до выхода личинки. В это время зародыш растет и развивается только за счет запаса питательных веществ, содержащихся в икринке. Эмбриональный период рипуса продолжается 220-240 суток. Эмбрионы эвритермны, эмбриональное развитие по данным О. А. Лебедевой (1976), в норме может происходить при температуре воды от +0 до 10оС, при содержании кислорода от 5,0 до 14,0 мг/л. Д. Прайс, проводя инкубацию икры сиговых рыб при постоянной температуре от 0 до 12оС, обнаружил, что успешное развитие эмбрионов происходит в узком диапазоне температур (от 0,5 до 6оС), а наиболее благоприятная температура +0,50С. Диаметр зрелых икринок до набухания равен 2,2 мм, а масса 7 мг. Оболочка прозрачная, слабая, плотно прилегает к поверхности яйца. Желток содержит многочисленные, разной величины жировые капли, которые расположены ближе к анимальному полюсу. Жировые капли, как и желток, являются питательным материалом для зародыша и, кроме того, играют роль гидростатического приспособления, благодаря которому анимальный полюс всегда занимает верхнее положение. Оболочка икринки имеет небольшое воронкообразное углубление, на дне которого имеется маленькое отверстие—микропиле. В яйцеклетку сперматозоид проникает через микропиле, где его ядро соединяется с ядром яйца и происходит оплодотворение. Эмбриональный период развития делится на несколько этапов. 12 I этап. Оводнение икринок, образование бластодиска (5 мин – 4 часа). Икра имеет две оболочки—наружную и внутреннюю. Когда икринка попадает в воду, происходит выделение содержимого кортикальных вакуо-лей, находящихся в поверхностном слое желтка. Осмотическое давление содержимого кортикальных вакуолей выше, чем в воде, поэтому вода через микроканальцы оболочек легко всасывается в икру. В результате этого образуется перевителлиновое пространство, отделяющее желток с зародышем от оболочки, и размер икринок увеличивается почти в полтора-два раза. Оболочка икринки становится упругой. Это предохраняет развивающийся эмбрион от механических повреждений (Мешков, 1977). Икринки имеют светло-оранжевую окраску, что обусловлено наличием в них каратиноидных пигментов. Пигменты играют важное значение при дыхании и обмене веществ эмбриона. В период набухания плазма начинает собираться у анимального полюса, постепенно формируется плазменный бугорок—бластодиск. Перевителлиновое пространство занимает к концу набухания треть объема икринки (рис. 2, а—г). Рисунок 2 - I этап эмбрионального развития 13 II этап. Дробление бластодиска от двух бластомеров до бластулы. Начало дробления – образование 2, 4, 8, 16 бластомеров (возраст 8, 12, 24, 48 ч, соответственно). После начала дробления можно хорошо отличить оплодотворенную икру от неоплодотворенной. У неоплодотворенной икры плазменный бугорок не имеет четких границ между отдельными бластомерами, как это наблюдается у оплодотворенной (рис. 3, а - г) (Мешков, 1977). Стадия крупноклеточной морулы. Образование 32 бластомеров. Дальнейший подсчет количества бластомеров становится затруднительным. Средняя морула (рис. 3 д, е). Поздняя или мелкоклеточная морула. Длится 2—3 сут. (рис. 3, ж). Рисунок 3 - Дробление и образование морулы III этап. Бластула. Процесс дробления заканчивается образованием эпителиальной бластулы (8 сут.). В области скопления мелких бластомеров образуется полость бластоцеля (рис. 4). Рисунок 4 - Образование полости бластоцеля 14 IV этап. Гаструляция (11 сут.). После образования бластулы начинается процесс гаструляции. Диаметр бластодиска увеличивается, образуется бластодерма, которая постепенно разрастается на поверхности желточного мешка в сторону вегетативного полюса (рис. 5, а). На бластодерме перед началом эпиболии (обрастания желтка бластодермой) образуется утолщение, называемое краевым узелком, из которого при последующем развитии формируется головной отдел эмбриона (рис. 5, б, в). Нарастающая краевая часть бластодиска окружена пояском краевой мезодермы, которая темноватой полоской охватывает прозрачную сферу желточного мешка (Мешков, 1977). Бластоцель заметно увеличивается, верхняя сторона его становится тоньше и выпячивается, образуя перибластический синус (рис. 5, г). Нарастающая краевая часть бластодиска окружена пояском краевой мезодермы, которая темноватой полоской охватывает прозрачную сферу желточного мешка. Рисунок 5 - Гаструляция 15 V этап. Органогенез. После гаструляции начинается формирование зародыша (15 сут). Начало сегментации мезодермы (рис. 6, а). Три четвертых желточного мешка покрыты бластодермой. Головной отдел эмбриона расширен, видна нервная бороздка (рис. 6, б). В течение этой стадии у зародыша закладывается сердечная трубка и хорда, появляются зачатки грудных плавников (Мешков, 1977). Нарастающая бластодерма постепенно покрывает уменьшающуюся свободную часть желточного мешка (25-27 сут), именуемую желточной пробкой (рис. 6, в). В хвостовой части зародыша появляется купферов пузырек. Образование глазных пузырей (рис. 6, г). Полностью замыкается желточная пробка и зарастает бластопор. В теле эмбриона 16 миотомов. По бокам головы глазные пузыри (35 сут.). Рисунок 6 - Органогенез VI этап. Обособление хвостового отдела от желточного мешка (40 сут). Образование хрусталика в глазах эмбриона (рис. 7). В головном отделе обособились передний, средний и продолговатый отделы мозга. Задняя часть хвоста начинает обособляться от желточного мешка (Мешков, 1977). 16 Рисунок 7 - Обособление хвостового отдела от желточного мешка VI этап. Появление системы кровообращения Начало пульсации сердечной трубки (45 сут). Хвост значительно обособился от желточного мешка. Эмбрион медленно переваливается с боку на бок внутри оболочки. Под хордой закладывается кишечная трубка. Появляется слуховая капсула. В области 7—8 миотомов образовались зачатки грудных плавников (рис. 8, а). Начало пигментации глаз (55 сут). В глазах появился черный пигмент — меланин. В теле эмбриона 60 сегментов. Пульсирующая сегментная трубка изогнута под прямым углом, передняя ее часть — зачаток желудочка, задняя - предсердия. В задней части кишечника образуется анальное отверстие (рис. 8 б) (Мешков, 1977). Начало оформления форменных элементов крови (60-70 сут). Сердце пульсирует еще медленно. На желточном мешке, с правой стороны сердеч-ной трубки, расположен кроветворный мешочек, наполненный эритробла-стами. Глаза сильно пигментированы. На желточном мешке вдоль тела по-явились первые меланофоры (рис.8 в). 17 Начало кровообращения (75 сут) (рис. 8 г). Пигментированные глаза хорошо просматриваются через оболочку икринки. Меланофоры покрывают туловищный и хвостовые отделы эмбриона. Печень полностью обособилась от кишечной трубки. Появились зачатки жаберных крышек. Грудные плавники увеличились (рис. 8 д, е) (Мешков, 1977). Образование подкишечно-желточной системы кровообращения (80—85 сут). Меланофоры расположены вдоль спинной части туловища, кишеч-ной трубки и задней половины желточного мешка, омываемой кровью. На нижней стороне головы появилось немного едва заметных желез вылупления Рисунок 8 - Появление системы кровообращения Исчезновение перибластического синуса и кроветворного мешочка (90 сут). Меланофоры появились в головном отделе. Голова отделилась от желточного мешка. Железы вылупления большими скоплениями расположены на перикардии, верхней и нижней челюстях, зачатке жаберной крышки, между глазами и слуховыми капсулами (рис. 9 б). Появление гиоидных дуг аорты (110 сут). Жаберная крышка покрывает первые две жаберные дуги. Меланофоры расположены по всей поверхности желточного мешка (рис. 9 в). 18 Рисунок 9 - Развитие системы кровообращения VIII этап. Подвижное состояние челюстей Начало движения челюсти эмбриона (130 сут). Активные движения грудными плавниками. В спинной плавниковой складке появилась выемка, делящая ее на передний и задние отделы (зачатки спинного и жирового плавников). Нижняя челюсть подвижна. Она густо покрыта железами вылупления. Эмбрионы, искусственно вылупленные из оболочки, активно плавают у поверхности (рис. 10 а) (Мешков, 1977). Рисунок 10 – Развитие рипуса (VIII этап), начало вылупления Появление и образование жаберных лепестков и псевдобранхий. На жаберных дужках появились зачатки жаберных лепестков. Начинается вы-лупление и скат свободных эмбрионов с нерестилищ. В искусственных условиях в это время вылупляются только нормально развитые зародыши. Вылупление, как правило, происходит головой вперед, и такие эмбрионы погибают. 19 IX этап. Вылупление (220 сут). Зародыши освобождаются из оболочек не все одновременно. Выклев начинается с появления единичных личинок, затем количество их увеличивается. Момент, когда в аппарате уже имеется несколько десятков личинок, можно считать началом выклева. При хороших условиях развития число личинок быстро увеличивается, и наступает массовый выклев. Освобождение зародышей от оболочек происходит следующим образом. В железе вылупления зародыша образуется особое вещество, которое с приближением стадии выклева начинает выделяться из железы вылупления в перивителлиновое пространство. Выделение фермента происходит постепенно и приводит к перевариванию оболочек, в результате снижается их прочность. Двигаясь в ослабленных оболочках, зародыш растягивает, а затем и разрывает их. Сначала появляется голова личинки или хвост, а потом освобождается вся личинка. Свободный эмбрион. Запасы желтка сильно сокращены. Печень позади желточного мешка. Грудные плавники сильно увеличены. Скорость эмбрионального развития сиговых рыб зависит от температуры среды. Установлено, что повышение температуры воды до известных пределов вызывает ускорение развития. Оплодотворение и прохождение начальных стадий эмбриогенеза при более низкой температуре воды приводит к сокращению продолжительности развития в зимний период. Уменьшение длительности эмбриогенеза сближает даты вылупления. Динамика развития эмбрионов рипуса при разных температурах воды показана в таблице 1. В процессе эмбриогенеза происходит закономерное изменение количества каротиноидных пигментов в цитоплазме и в желтке. Интенсивность пигментации икры, в основном, обусловлена интенсивностью цвета жировых капель, собственно желток и плазма окрашены слабо. Подготовка эмбрионов к выходу из оболочки один из критических периодов эмбрионального развития (Мешков, 1977). 20 Известно, что выделение ферментов из желез вылупления происходит под влиянием изменений светового и температурного режимов, химизма воды, а также вследствие действия на икру толчков и встряхиваний (Богданов, 1998).
Не смогли найти подходящую работу?
Вы можете заказать учебную работу от 100 рублей у наших авторов.
Оформите заказ и авторы начнут откликаться уже через 5 мин!
Служба поддержки сервиса
+7(499)346-70-08
Принимаем к оплате
Способы оплаты
© «Препод24»

Все права защищены

Разработка движка сайта

/slider/1.jpg /slider/2.jpg /slider/3.jpg /slider/4.jpg /slider/5.jpg